運輸和保存：可選擇干冰運輸及發送復蘇存活細胞方式：

（1）干冰運輸，收到后 立即轉入液氮或者-80 度冰箱凍存或直接復蘇；

（2）存活細胞，收到后應繼續生 長，傳代達到細胞生長狀態良好時，再進行凍存。具體操作見細胞培養步驟。 收到細胞后請拍照，3 天內如果發現污染，請及時拍照與我們聯系。 

 

細胞用途：僅供科研使用。 

 

細胞接收后的處理：

1） 收到細胞后，請檢查發貨培養瓶的狀況，若發現培養瓶破損、有液溢出及細 胞有污染，請拍照后及時聯系我們。 

2） 在顯微鏡下確認細胞生長狀態時，最好在低倍鏡（4 或 5X 物鏡)下進行，能 準確判斷細胞的傳代密度。看細胞的形態請在 10X 和 20×物鏡下，同時給剛收 到的細胞拍照，（10×，20×）各 2-3 張以及培養瓶外觀照片一張留存，作為細 胞需要售后時提供收到細胞時細胞狀態的依據。

3） 觀察好細胞狀態后，75%酒精消毒瓶壁將T25瓶置于37℃培養箱放置約2-3h。

4） 貼壁細胞：在運輸過程中貼壁細胞會有脫落的現象，如發現貼壁細胞有脫落 或者脫落后抱團生長，可將 T25 瓶置于 37℃培養箱放置約 2-3h，然后抽出瓶中 的培養基和未貼壁細胞 1000rpm 離心 5 分鐘，棄去上清重懸后接種到加有按照 說明書細胞培養條件新配制的完全培養基的原培養瓶中（或新的培養瓶中）。

5） 懸浮細胞：T25 瓶置于 37℃培養箱放置約 2-3h，然后抽出瓶中的培養基和 細胞 1000rpm 離心 5 分鐘，棄去上清重懸后接種到新的培養瓶中（加入按照說 明書細胞培養條件新配制的完全培養基）。                         

細胞培養步驟

一．培養基及培養凍存條件準備：

1） 準備 1640+10%FBS

2） 培養條件： 氣相：空氣，95%；二氧化碳，5%。 溫度：37 攝氏度，培養箱 濕度為 70%-80%。

3） 凍存液：90%血清，10%DMSO，現用現配。

二． 細胞處理：

1） 復蘇細胞：將含有 1mL 細胞懸液的凍存管在 37℃水浴中迅速搖晃解凍，加 入 4mL 培養基混合均勻。在 1000RPM 條件下離心 4 分鐘，棄去上清液，補 加 1-2mL 培養基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入培養瓶中培養過夜（或將 細胞懸液加入 10cm 皿中，加入約 8ml 培養基，培養過夜）。第二天換液并檢 查細胞密度。

2） 細胞傳代：如果細胞密度達 80%-90%，即可進行傳代培養。 

對于貼壁細胞，傳代可參考以下方法：

1. 棄去培養上清，用不含鈣、鎂離子的 PBS 潤洗細胞 1-2 次。

2. 加 2ml 消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培養瓶中，置于 37℃培 養箱中消化 1-2 分鐘，然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況，若細胞大部 分變圓并脫落，迅速拿回操作臺，輕敲幾下培養瓶后加少量培養基終止 消化。

3. 按 6-8ml/瓶補加培養基，輕輕打勻后吸出，在 1000RPM 條件下離心 4 分 鐘，棄去上清液，補加 1-2mL 培養液后吹勻。

4. 將細胞懸液按 1：2 到 1：5 的比例分到新的含 8ml 培養基的新皿中或者 瓶中。 注：第一次傳代推薦傳代比例為 1:2，以后傳代比例可根據客戶需要自己決 定。

3）細胞凍存：待細胞生長狀態良好時，可進行細胞凍存。 下面 T25 瓶為例；       

1．細胞凍存時，棄去培養基后，PBS 清洗瓶底 1-2 次后加入 1ml 胰酶，細 胞變圓脫落后，加入 2ml 完全培養基終止消化，可使用血球計數板計數。       

2．1000RPM 離心 5 分鐘去掉上清。用血清重懸浮，加 DMSO 至最終濃度為 10%。加入 DMSO 后迅速混勻，按每 1ml 的數量分配到凍存管中，注意凍存 管做好標識。本公司按每個凍存管細胞數目大于 1X106個細胞凍存。

3．將凍存管置于程序降溫盒中，放入-80 度冰箱，至少 2 個小時以后轉入液 氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。 

 

 

注意事項：  1. 收到細胞后，若發現干冰已揮發干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細胞有污染，請立 即與我們聯系。 2. 所有動物細胞均視為有潛在的生物危害性，必須在二級生物安全臺內操作，并請注 意防護，所有廢液及接觸過此細胞的器皿需要滅菌后方能丟棄。